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7154 MCD AGAR SAL Y MANITOL 10 PLACAS
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7154 MCD AGAR SAL Y MANITOL
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USO
Agar Sal y Manitol es utilizado para el aislamiento selectivo y diferenciación de estafilococos patógenos a partir de muestras clínicas y de diversos materiales.
EXPLICACIÓN
Agar Sal y Manitol es un medio altamente selectivo, Koch en 1942, señaló solamente el crecimiento de Estafilococos en medios de cultivo que contenían 7.5% de cloruro de sodio. Chapman en estudios posteriores analizó con mayor detalle y concluyó que al adicionar cloruro de sodio al 7.5% al Agar Rojo de Fenol y Manitol daba como resultado un medio mejorado para el aislamiento de Estafilococos (coagulasa positivo).
Este es un medio nutritivo debido al contenido de peptonas y de extracto de carne que proporcionan los factores de crecimiento esenciales como son carbono, nitrógeno, vitaminas y minerales, la concentración de cloruro de sodio al 7.5% inhibe de forma parcial o completa el crecimiento de otros microorganismos, cuando hay producción de ácido por la fermentación del manitol, ésta es indicada por un cambio en el indicador rojo fenol y las colonias aparecen con un halo amarillo. El agar es adicionado como agente solidificante.
FORMULA POR LITRO
| Digerido péptico de tejido animal | 5 g | D-Manitol | 10 g |
| Digerido pancreático de caseína | 5 g | Rojo de fenol | 0.025 g |
| Extracto de carne | 1 g | Agar bacteriológico | 15 g |
| Cloruro de sodio | 75 g | ||
| pH 7.4 ± 0.2 a 25°C | |||
CARACTERÍSTICAS
El crecimiento color de la colonia y recuperación se describe en la siguiente tabla:
| MICROORGANISMOS | ATCC | CRECIMIENTO | COLOR DE LA COLONIA | INÓCULO UFC/mL | % DE RECUPERACIÓN |
|---|---|---|---|---|---|
| Escherichia coli | 25922 | Inhibición total. | – | >10^4 | 0% |
| Proteus mirabilis | 12453 | Inhibición total o parcial. | – | >10^4 | ≤25% |
| Staphylococcus aureus | 25923 | Bueno | Amarillo | ≤ 100 | ≥50% |
| Staphylococcus aureus | 13150 | Bueno | Amarillo | ≤ 100 | ≥50% |
| Staphylococcus epidermidis | 12228 | Bueno | Rojas | ≤ 100 | ≥50% |
BIBLIOGRAFÍA
1. Chapman, G.H. 1945. The significance of sodium chloride in studies of staphylococci. J. Bacteriol. 50:201-203.
2. Kloos, W.E., and T.L. Bannerman. 1995. Staphylococcus and Micrococcus. In P.R. Murray, E.J. Baron, M.A. Pfaller, F.C., Tenover, and R.H.
3. Yolken (ed.) Manual of clinical microbiology, 6th ed. American Society for Microbiology. Washignton, D.C.
4. United States Pharmacopeial Convention. 1995. The United States pharmacopeia, 2nd ed. The United States Pharmacopeial Convention, Rockville, M.D.
5. Hitchins, A.D., T.T. Tran, and J.E. MacCarron. 1995. Microbiology methods for cosmetics, p. 23.01-23.12. In Bacteriological analytical manual, 8th ed. AOAC. International, Gaithersburg,M.D.
6. McColloch Am. j. Vet. Research, 8:173. 1947. Velilla, Faber, and Pelczar Am. J. Vet. Research, 8:275. 1947. Jarvik T., Smillie C., Groisman E. A. y Ochman H. 2010 Short-Term Signatures of Evolutionary Change in the Salmonella enterica Serovar Typhimurium 14028 Gemome. Journal of Bacteriology.
7. Rodríguez C.E. 2005 Bacteriología General: Principios y Prácticas de Laboratorio. Ed. Universidad de Costa Rica. 475 págs.
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